KAJIAN KONSENTRASI BAP DAN NAA TERHADAP MULTIPLIKASI KENCUR IN VITRO

Samanhudi; Bambang Pujiasmanto; Ekky Permata Dewi

doi:10.55127/ae.v15i1.67

Samanhudi Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian UNS dan Pusat Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Biodiversitas LPPM UNS, Jl. Ir. Sutami 36A Surakarta, Indonesia
Bambang Pujiasmanto Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian UNS dan Pusat Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Biodiversitas LPPM UNS, Jl. Ir. Sutami 36A Surakarta, Indonesia
Ekky Permata Dewi Mahasiswa Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian UNS, Jl. Ir. Sutami 36A Surakarta, Indonesia

DOI: https://doi.org/10.55127/ae.v15i1.67

Keywords: Kencur, Multiplikasi, BAP, NAA

Abstract

Perbanyakan kencur (Kaempferia galanga) melalui budidaya konvensional mempunyai beberapa masalah, antara lain penyediaan bibit dan serangan patogen. Penyediaan bibit merupakan masalah paling utama dalam budidaya kencur secara konvensional. Salah satu cara penyediaan bibit kencur secara cepat yaitu dengan metode kultur jaringan. Penelitian ini bertujuan untuk mendapatkan kombinasi BAP dan NAA yang memberikan efek terbaik terhadap pertumbuhan eksplan kencur in vitro. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Fisiologi Tumbuhan dan Bioteknologi Fakultas Pertanian, Universitas Sebelas Maret Surakarta, mulai bulan Maret 2018 sampai dengan April 2019. Rancangan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap dengan dua faktor (BAP dan NAA). Peubah pengamatan meliputi saat muncul tunas, tinggi tunas, jumlah tunas, saat muncul akar, panjang akar, jumlah akar, saat muncul daun, dan jumlah daun. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian BAP 2 ppm dan NAA 0 ppm mampu menghasilkan rata-rata 2 tunas dengan rata-rata tinggi tunas tertinggi yaitu 4 cm, sedangkan pemberian BAP 2 ppm dan NAA 1 ppm mampu menghasilkan akar sebanyak 7 buah. Hal ini membuktikan bahwa pemberian BAP sampai taraf 2 ppm dan NAA taraf 1 ppm dapat memacu pertumbuhan tunas dan akar tanaman kencur secara in vitro.

References

Ahmad D, Wicaksana N, Shimazaki T, Kikuch, A, Jatoi SA, Watanabe, KN. 2011. Environmentally safe in vitro regeneration protocol for Curcuma, Kaempferia and Zingiber. African J Biotechnol. Vol. 10 No. 43: 8584–92.

Ayob Z, Wagiran A, and Samad AA. 2013. Potential of tissue cultured medicinal plants in Malaysia. J Teknol (Sciences Eng.) Vol. 62 No.1: 111–7.

Lestari EG and Hutami S. 2005. Produksi bibit kencur (Kaempferia galanga L.) melalui kultur jaringan. Ber Biol. Vol. 7 No. 6: 315–21.

Mustafaanand PH. 2014. In-vitro plant regeneration in Kaempferia rotunda Linn. through somatic embryogenesis - a rare medicinal plant. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci Vol. 3 No. 9: 409–14.

Ngomuo M, Mneney E, and Ndakidemi PA. 2014. The in vitro propagation techniques for producing banana using shoot tip cultures. Am J Plant Sci. Vol. 5 No. 11

Ginting BAA, and Resmisari RS. 2017. Shoot regeneration of Sandalwood (Santalum album L.) by different media and Benzile Amino Purine (BAP) concentrations. Proc. of Int Conf on Green Technol. Vol. 8 No. 1: 353–7.

Senarath RMUS, Karunarathna BMAC, Senarath WTPSK, and Jimmy GC. 2017. In vitro propagation of Kaempferia galanga (zingiberaceae) and comparison of larvicidal activity and phytochemical identities of rhizomes of tissue cultured and naturally grown plants. J Appl Biotechnol Bioeng. Vol. 2 No.4: 157–62.

Ferdous MM, Shahinozzaman M, Faruq MO, Paul SP, Azad MAK, and Amin, MN. 2012. In vitro propagation of a medicinal plant - mango ginger (Curcuma amada Roxb.). Int J Biosci. Vol. 2 No. 11: 166–72.

Kalpana M, and Anbazhagan M. 2009. In vitro production of Kaempferia galanga (L.) - an endangered medicinal plant. J Phytol. Vol. 1 No. 1: 56–61.

Parida R, Mohanty S, Kuanar A, and Nayak S. 2010. Rapid multiplication and in vitro production of leaf biomass in Kaempferia galanga through tissue culture. Electron J Biotechnol. Vol. 13 No. 4.

Rajasekharan PE, Ambika SR, and Ganeshan S. 2015. In vitro regeneration and conservation of Kaempferia galanga. 2(2): 35–43. https://www.researchgate.net/publication/275036584

Raihana R, Faridah QZ, Julia AA, Abdelmageed AHA, and Kadir MA. 2011. In vitro culture of curcuma mangga from rhizome bud. J Med Plant Res. Vol. 5 No. 28: 6418–22.

Yusuf NA, Annuar MMS, and Khalid N. 2011. Rapid micropropagation of Boesenbergia rotunda (L.) Mansf. Kulturpfl. (a valuable medicinal plant) from shoot bud explants. African J Biotechnol Vol 10 No.7: 1194–9.

Eldessoky DS, Ismail RM, Abdel-Hadi AHA, and Abdallah, N. 2011. Establishment of regeneration and transformation system of sugarcane cultivar GT54-9 (C9). GM Crops. Vol. 2 No. 2: 126–34.

Dewi IS, Wahyuni DK, and Purnobasuki H. 2012. Perkembangan kultur daun Aglonema sp. var Siam Pearl, Aglonema sp. var Lady Valentin dan Aglonema sp. var Lipstik dengan perlakuan zat pengatur tumbuh IAA dan BAP. Berk. Penel. Hayati Vol. 17: 197–203.

Kafindra L, Khumaida N, and Ardie SW. 2015. Induksi Rimpang Mikro Kaempferia parviflora secara In Vitro dengan Penambahan BAP dan Sukrosa. J Horti Indonesia. Vol. 6 No.1: 54–63.

Labrooy C, Abdullah TL, and Stanslas J. 2020. Influence of N6-Benzyladenine and sucrose on in vitro direct regeneration and microrhizome induction of Kaempferia parviflora Wall. ex Baker, an important ethnomedicinal herb of Asia. Tropical Life Sci Res, Vol. 31 No. 1: 123–39.

Karjadi A, and Buchory A. 2007. Pengaruh NAA dan BAP terhadap pertumbuhan jaringan meristem bawang putih pada media B5. J Hort. Vol. 17 No.3: 217–23.